<	Октябрь 2009					>
П	В	С	Ч	П	С	В
			1	2	3	4
5	6	7	8	9	10	11
12	13	14	15	16	17	18
19	20	21	22	23	24	25
26	27	28	29	30	31

Болезни ящериц. Криптоспоридиоз

Болезни рептилий инфекционного характера - это серьезная проблема для любого террариумиста, особенно если речь идет о крупных коллекциях. Одной из таких болезней является криптоспоридиоз.

 

Криптоспоридия — это род паразитических кокцидий, вызывающих неизлечимую болезнь у ящериц и змей, которую, к тому же, трудно диагностировать и профилактировать. Описан у 15 видов ящериц и 40 видов змей (O`Donoghue, 1995; Upton, 1990). Для человека криптоспоридии рептилий не заразны.

 

Впервые криптоспоридия была обнаружена у рептилий Браунштайном (Brownstein) в 1977 году. Род Cryptosporidium включает в себя 11 видов и обнаруживается у млекопитающих, птиц, рептилий и рыб. В основном обитает в желудочно-кишечном тракте, но может встречаться и в других органах. У рептилий чаще всего встречается вид Cryptosporidium serpensis. От сцинков был также изолирован вид Cryptosporidium saurophilum.

 

Систематика и история описания криптоспоридий
Тизер в 1907 г первым обнаружил видовые различия внутри рода Cryptosporidium и описал два вида Cryptosporidium muris and Cryptosporidium parvum у лабораторных мышей без клинических проявлений болезни. В 1955 г новый вид Cryptosporidium meleagridis был описан в связи с гибелью цыплят от гастроэнтерита. До этого времени криптоспоридии считались безвредными комменсалами. Начиная с 1970 г. криптоспоридии были обнаружены в желудочно-кишечном тракте и/или дыхательных путях большинства млекопитающих, птиц, рыб и рептилий.
Начиная с 80х годов прошлого века было описано около 20 видов криптоспоридий, в основном на основании хозяинной специфичности, в настоящее время большинство исследователей признают валидными всего 8 (C. muris, C. parvum, C. wrairi, C. felis, C. meleagridis, C. baileyi, C. serpentis, and C. Nasorum) и 8 генотипов C. parvum, собранных в две основных группы: к первой относятся изоляты C. muris и C. serpentis, ко второй — остальные виды и генотипы С. рarvum. Нуклеотидные последовательности варьировались в изолятах C. muris от крупного рогатого скота и грызунов.

В настоящее время, основываясь на данных анализа нуклеотидной последовательности малой субъединицы р-РНК и гена, кодирующего производство белка температурного шока, можно с уверенностью считать доказанными следующие утверждения:

• достоверно установлено 8 видов криптоспоридий C. baileyi, C. parvum, C. meleagridis, C. muris, C. serpentis, C. felis, C. wrairi, и неизвестные Cryptosporidium sp.);
• существует два различных генотипа C.muris и 8 генотипов C.parvum (человека, бычий, собачий, хорьков, кенгуру, обезьяний, мышиный и свиной), имеющие родство с C. felis, C. meleagridis, and C. wrairi
• некоторые генотипы C.parvum могут быть криптическими (скрытыми) видами (при морфологическом сходстве имеют различный генетический код).

 

Жизненный цикл криптоспоридий предположительно прямой. Отличие криптоспоридий от других кокцидий состоит в том, что их паразитические вакуоли располагаются в микроворсинках, тогда как вакуоли эймерий и изоспор поражают глубжележащие области. Споруляция криптоспоридий происходит внутри клеток хозяина, таким образом ооцисты в фекалиях инвазивны уже при попадании в окружающую среду. Выделяются два вида ооцист: 80% имеют толстые стенки, устойчивы во внешней среде и предназначены для заражения других животных, а 20% имеют тонкие стенки и поддерживают жизненный цикл внутри тела хозяина. Таким образом тяжесть инфекции зависит от уровня реинфекции тонкостенными оцистами, повторных заражений толстостенными и иммунного статуса хозяина. Очевидно, что рептилии в неволе будут подвержены большей атаке паразитов, чем свободноживущие.

 

Путь передачи фекально-оральный, передача возбудителя происходит от животного к животному при непосредственном контакте или контакте с зараженными объектами. У млекопитающих заражение происходит в основном через воду. Для рептилий, содержащихся в неволе, данный способ передачи имеет гораздо меньшее значение. Заражение через кормление инфицированными мышами представляется маловероятным, поскольку все попытки заразить мышей выделенными от рептилий криптоспоридиями вида Cryptosporidium muris оказались неудачными.

 

Симптомы. Болезнь у змей и ящериц протекает по-разному. Если у первых криптоспоридии поражают в основном слизистую желудка, то у вторых — кишечник, что приводит к рвоте. Первоначально развивается отказ от корма, апатия, истощение и депрессия. Змеи могут годами не показывать клинических признаков болезни, будучи носителями возбудителя. На второй стадии у змей может развивать утолщение в средней части тела вследствие гипертрофического гастрита, впрочем, зачастую его можно увидеть только на вскрытии. У ящериц поражается кишечник, для варанов и хамелеонов Старого Света типично также поражение слизистой желудка. Атипичные случаи описаны в виде поражений почек у зеленой игуаны (Фрай, 1999). Также у игуан с криптоспоридиозом были отмечены случаи развития тимпании, увеличения слюнных желез и полипов в ухе.

Криптоспоридиоз можно заподозрить у змей и ящериц с хронической рвотой в случае, когда обычная терапия остается безуспешной, наблюдается усиленная потеря веса (до 60-70%), депрессия (возможно вследствие кишечных болей), слизистый стул мажущейся консистенции, у змей — увеличение средней части тела. Смерть может наступить быстро, даже у животных, бывших бессимптомными носителями в течение нескольких лет или месяцев.

 

Гистологически у змей в тканях желудка наблюдается расширение канальцев и разрастание соединительной ткани. В кишечнике зараженных ящериц, черепах и редко змей отмечается инфильтрация гетерофилами, лимфоцитами и макрофагами, а также наличие паразитов более чем в 80% клеток.

 

Диагностика. Исследование фекалий, рвотных масс и желудочных смывов. Несмотря на то, что криптоспоридии могут быть обнаружены в неокрашенных мазках, чувствительность метода повышается при окраске мазков кислотоустойчивыми красителями. Ооцисты содержат по четыре спорозоита без спороцист и имеют очень малые размеры (менее 4 микрон). количество ооцист зависит от количества фекалий, поэтому небольшие пробы могут оказаться ложно отрицательными. В стадии субклинической инфекции может потребоваться 5-7 исследований, чтобы установить факт наличия криптоспоридий в кале. Обнаружение ооцист затрудняет периодичность их выделения в окружающую среду.

 

 

Рентгенологическое исследование с контрастом позволяет отличить отек в области желудка, не связанный с увеличением самого органа от такового при криптоспоридиозе, когда сужается или полностью закупоривается просвет желудка.

Биопсия желудка (хирургическая или при помощи эндоскопа) позволяет оценить тяжесть заболевания и прогноз, поскольку выявляет степень гиперплазии слизистой. Однако, поскольку слизистая оболочка желудка имеет складки, результат может быть ложноотрицательным.

 

В гуманитарной медицине были разработаны серологические тесты, которые затем были адаптированы для диагностики криптоспоридиоза у рептилий путем обнаружения в крови специфических антител.

 

Лечение криптоспоридиоза у  рептилий до сих пор не разработано. Кранфилд и Крачек (Cranfield, Craczyk, 1999 г) опубликовали данные об успешном применении гипериммунной сыворотки коров в экспериментах с варанами. Однако данный продукт не производится в коммерческих масштабах и не был протестирован на ящерицах с кишечными проявлениями криптоспоридиоза, а не желудочными, как у варанов. В настоящее время для лечения применяют антибиотики: паромомицин 100-360 мг/кг ежедневно (Carpenter et al, 2001), бисептол 40 мг/кг и спирамицин 300 000 ед/кг ежедневно (Васильевб 2003) курсом 2-4 недели и кокцидиостатики: толтразурил 10-25 мг/кг однократно для ящериц (Morby, Sloboda, 2004).

Однако, несмотря на улучшение состояния животных после проведенного лечения, есть данные о том, что полного избавления организма от криптоспоридий не наступает.

 

Уничтожение возбудителя во внешней среде эффективнее всего достигается при повышенной температуре (100^оС, 30 минут), замораживании и высушивании. Ооцисты устойчивы ко многим дезинфектантам, в том числе к активному хлору и йоду. Эффективны горячий пар, формалин, 5-10% аммиак (Васильев, 2005).

 

Важно соблюдать условия гигиены и температурно-влажностный режим. Животных лучше содержать небольшими группами, в качестве субстрата использовать бумагу, которою легко менять ежедневно. Также необходима поддерживающая терапия — подкожное или внутривенное введение физиологических растворов и насильственное кормление.

Вернуться на главную раздела "Ящерицы"